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    細(xì)胞傳代的方法和注意事項(xiàng)都有哪些?

    發(fā)布時(shí)間: 2021-12-08  點(diǎn)擊次數(shù): 4906次

    在細(xì)胞傳代時(shí),都應(yīng)該用哪種方法較為合適?或者在做細(xì)胞傳代時(shí)都應(yīng)注意哪些事項(xiàng)呢?怎樣才能做好細(xì)胞傳代讓接下的實(shí)驗(yàn)更順呢?帶著這些疑問,本期小編匯總些細(xì)胞傳代的經(jīng)驗(yàn)分享給大家,希望對大家做細(xì)胞傳代時(shí)有所幫助。


    1、細(xì)胞傳代的方法都有哪些?

    根據(jù)不同的細(xì)胞采取不同的方法。貼壁生長的細(xì)胞用消化法傳代;部分貼壁生長的細(xì)胞用直接吹打即可傳代;懸浮生長的細(xì)胞可以采用直接吹打或離心分離后傳代,或用自然沉降法吸除上清后,再吹打。


    2、原代培養(yǎng)的第一次傳代應(yīng)注意的問題?

    細(xì)胞沒有生長到足以覆蓋瓶底壁的大部分表面以前,不要急于傳代;原代培養(yǎng)時(shí)細(xì)胞多為混雜生長,不同的細(xì)胞有不同的消化時(shí)間,因此要根據(jù)需要注意觀察及時(shí)處理,并根據(jù)不同細(xì)胞對胰蛋白酶的耐受時(shí)間而分離和純化所需要的細(xì)胞;

    吹打細(xì)胞時(shí)動作要輕巧盡可能減少對細(xì)胞的損傷;第一次傳代時(shí)細(xì)胞接種數(shù)量要多一些,使細(xì)胞能盡快適應(yīng)新環(huán)境而利于細(xì)胞生存和增值;隨消化分離而脫落的組織塊也可一并傳入新的培養(yǎng)瓶。


    3、使用胰蛋白酶時(shí)加入EDTA的目的?應(yīng)如何處理?

    EDTA作用較胰蛋白酶緩和,主要作用在于能從組織生存環(huán)境中吸取Ca2+、Mg2+,這些離子是維持組織完整的重要因素。但EDTA單獨(dú)使用不能使細(xì)胞*分散,因而常與胰蛋白酶按不同比例混合使用,效果較好。常用比例為1:1或者2份EDTA:1份胰蛋白酶。EDTA的工作液濃度為0.02%,用不含Ca2+、Mg2+的BSS配置。如果使用EDTA,在終止消化前,需用緩沖液將消化液清除后才能加培養(yǎng)液。第一次開瓶后應(yīng)立即少量分裝于無菌試管中,保存于 –20 ℃,避免反復(fù)冷凍解凍造成胰蛋白酶的活性降低,并可減少污染的機(jī)會。


    4、欲將一般動物細(xì)胞離心下來,其離心速率應(yīng)為多少轉(zhuǎn)速?

    欲回收動物細(xì)胞,其離心速率一般為800~1000 rpm,5~10 分鐘,過高的轉(zhuǎn)速,將造成細(xì)胞死亡。


    5、細(xì)胞的接種密度為何?

    依照細(xì)胞株基本數(shù)據(jù)上的接種密度或稀釋分盤的比例接種即可。細(xì)胞數(shù)太少或稀釋的太多亦是造成細(xì)胞無法生長的重要原因之一。


    6、細(xì)胞交叉污染的可能原因?

    多種細(xì)胞系進(jìn)行維持傳代操作時(shí),各細(xì)胞系所需的器材和溶液沒有嚴(yán)格分開,往往會使一種細(xì)胞被另一種細(xì)胞污染。


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